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牛源性成分染料法荧光定量PCR试剂盒图片
产品货号:
BTN14-122
中文名称:
牛源性成分染料法荧光定量PCR试剂盒
英文名称:
Cattle-Derived Material SYBR PCR Kit
产品规格:
50次
发货周期:
1~3天
产品价格:
询价
本产品是根据PCR原理开发的试剂盒,可用于检测食品或其他材料中是否有牛的成分。


现代食品加工工艺极大改变了食材原有的味道、气味、色泽、纹理和质地等特性,因此传统的感官鉴别技术已经无法对食材的真伪进行准确的鉴定。同时部分食材还有致敏性,因此基于基因检测的快速灵敏的食材来源检测技术将对食品监管和安全提供重要的保障。


  1. 即开即用,用户只需要提供样品DNA。
  2. 根据牛保守区域设计引物,能专一性地检测出样品中的牛成分,但不能检测其他非牛成分。
  3. 荧光定量PCR检测,比常规PCR更加灵敏。
  4. 快速,整个检测过程(按一个样品计)所需时间仅为2.0小时。
  5. 一管式闭管操作,降低了交叉污染。
  6. 提供阳性标准品,便于分析实验结果。
  7. 对混合样品中牛成分的检测下限为0.1%,对样品中牛成分的核酸检测下限为1.0ng/μL。
  8. 本产品只能用于科研,足够50次20μL体系的荧光定量PCR。



组分规格
2×qPCR MagicMix0.5mL
荧光PCR专用模板稀释液1mL
牛源性成分PCR引物混合液100μL
牛源性成分PCR阳性对照50μL
免DNA提取试剂溶液A成分一50μL
免DNA提取试剂溶液A成分二100μL
免DNA提取试剂溶液B400μL

保存:-20℃,有效期一年。


一、稀释标准曲线样品(以102~107拷贝/μL这6个10倍稀释度为例)
由于标准品浓度非常高,因此下列稀释操作一定要在独立的区域进行,千万不能污染样品或本试剂盒的其他成分)。为增加产品稳定性和避免扩散传染性病原,本产品不提供活体样品做阳性对照,只提供无传染性的DNA片段作为阳性对照。
  1. 标记6个离心管,分别为7,6,5,4,3,2。
  2. 用带芯枪头分别加入45μL荧光PCR专用模板稀释液,最好用带芯枪头,下同)。
  3. 在7号管中加入5μL阳性对照(浓度为1×108拷贝/μL,试剂盒提供),充分震荡1分钟,得1×107拷贝/μL的标准曲线样品。放冰上待用。
  4. 换枪头,在6号管中加入5μL 1×107拷贝/μL的阳性对照(上步稀释所得),充分震荡1分钟,得1×106拷贝/μL的标准曲线样品。放冰上待用。
  5. 换枪头,在5号管中加入5μL 1×106拷贝/μL的阳性对照(上步稀释所得),充分震荡1分钟,得1×105拷贝/μL的标准曲线样品。放冰上待用。
  6. 重复上面的操作直到得到6个稀释度的标准曲线样品。放冰上待用。


二、样品DNA的制备
  1. 用自选方法纯化样品的DNA,本产品跟市场上绝大多数核酸纯化产品兼容。
  2. 如果有N个样品,则需要进行N+2个样品提取,多出的一个用作样品制备阳性对照管、另一个用作样品制备阴性对照管。如果用本试剂盒自带的DNA释放剂试用装。则按下面步骤操作:
  3. 配制溶液A工作液。以配制1mL工作液(足够10个样品)为例:在一干净塑料管中加入10μL溶液A成分一,20μL溶液A成分二和970μL超纯水,充分混合均匀即可。溶液A工作液可室温放置,但最好在一周内用完,不要长期放置。一次检测一个样品需要100μL溶液A工作液,1mL工作液足够10个样品。如果待测样品数量为其他数字,配制的溶液A工作液的体积需要做相应的调整。
  4. 在标记好的N+2个离心管中,加入1~5mg固体样品(半粒芝麻大小)或5μL液体样品待测样品。在样品制备阳性对照中加入5μL阳性对照,在样品制备阴性对照中加入5μL水。
  5. 在每个管中加入100μL溶液A工作液,确保固体样品被溶液淹埋,如果是液体样品则震荡混匀。
  6. 95℃保温10分钟。
  7. 待冷却到常温后加入10μL溶液B并混匀得DNA释放液。每个样品得到的DNA释放液足够进行50-100次PCR。


三、设置qPCR反应(20μL体系,在样品制备室进行)
  1. 如果只做1次重复,则标记N+9个PCR管,其中N+2个用于上步得到的N+2个样品,1个用于PCR阴性对照,6个用于标准曲线样品(也充当PCR阳性对照)。
    如果做2~3次重复,则反应设置数量相应增加2或3倍。
  2. 在标记管中按下表加入各成分(本表只列出一次重复。样品管和阴性对照设置完毕后才设置阳性对照,并且阳性对照样品要等所有管子盖上盖子储存好后最后加):
    成分样品管
    N+2个
    PCR阴性
    对照管
    曲线样品管
    (2~7管)
    2×qPCR MagicMix各10μL10μL各10μL
    牛源型成分PCR引物混合液各2μL2μL各2μL
    自备10×ROX(见注)各2μL2μL各2μL
    待测样品DNA模板各6μL不加不加
    第7步所得标准曲线样品稀释液(2~7号)不加不加各6μL
    注:仅ABI7500、7700和7900仪器需要使用ROX作为对照,其他荧光PCR仪器(如iCycler IQ、MJ Option、MJ Chromo4、MX3000、MX4000、RotorGene3000、RotorGene 6000和LightCycler480)不需要使用ROX,则用水替代。
  3. 盖上盖子后上机,按下面参数进行qPCR(具体PCR参数可以根据qPCR仪器的不同而自行优化)。


四、qPCR反应参数
  1. 盖上盖子后上机,按下面参数进行PCR:
    过程温度时间
    预变性94℃5min
    PCR反应
    (35个循环)
    94℃0.5min
    60℃0.5min(采集SYBR通道的荧光信号)
    72℃0.5min
    最后延伸72℃10min


五、数据处理
  1. 设定60℃~96℃范围的融解曲线分析,排除假阳性。
  2. 如果把本试剂盒用于定量检测,则以阳性对照浓度的log值为横轴,以Ct值为纵轴,绘制标准曲线。再以待测样品的Ct值从标准曲线上推算出样品DNA浓度的log值,再推算出其浓度。
  3. 如果把本试剂盒用于定性检测,只判断阳性或阴性,则阴性对照Ct必须大于或等于40。阳性对照必须有荧光对数增长,有典型扩增曲线,Ct值应该小于或等于30。对待测样品,如果其Ct大于或等于40则为阴性,如果小于或等于35则为阳性。如果在35~40之间,则重复一次。重复实验的Ct值如果大于或等于40则为阴性,如果小于40,则为阳性。

六、电泳检测
  1. 如果有必要电泳确认,可取10~20μL PCR产物直接在琼脂糖凝胶上电泳产物的大小为150bp。开盖电泳验证容易污染实验环境,强烈不建议采用此方法。




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